论文| Gillespie J, Pietrzak M, Song M-A, Chung D. Cells, 2025, 14(14): 1060
题目| A Meta-Review of Spatial Transcriptomics Analysis Software
DOI| 10.3390/cells14141060
机构| 俄亥俄州立大学(Ohio State University)生物医学信息学系 / 综合癌症中心
一句话总结
空间转录组(ST)分析工具已经「多到选不过来」,但各软件论文里的数据集、硬件和评价指标各不相同,很难直接比。
这篇 Meta-Review不做新的 Benchmark,而是把已有 Benchmark 文献里的结果二次整合,按 ST 分析中最常做的 四大步骤——组织域识别、空间可变基因(SVG)、细胞通讯、去卷积——给出跨研究一致表现较好的软件推荐,并强调:没有万能工具,选型必须结合数据类型、平台和算力。
为什么需要这篇综述?
Bulk RNA-seq 看的是样本平均表达,scRNA-seq 能到单细胞但丢失空间位置。ST 把基因表达 + 空间坐标合在一起,适合研究:
肿瘤异质性与免疫浸润的空间格局 发育过程中的区域化表达 组织图谱构建 配体-受体介导的细胞邻域通讯
问题是:每个软件单独发 paper 时,用的数据集、评价指标、硬件环境都不一样。只有在统一条件下的 head-to-head Benchmark,才更有参考价值。
本文整合的选型维度(优先级不完全相同)包括:
| 准确性 | |
| 运行时间 | |
| 算力需求 | |
| 编程语言 | |
| Visium 兼容性 |
第一步:组织域识别(Tissue Architecture Identification)
做什么:结合表达谱和空间坐标,把 spot/细胞聚成空间域,为注释细胞类型、划分功能区打基础。
整合了哪些 Benchmark:Cheng et al.、Hu et al.、Yuan et al. 三项研究,共比较 15–23 款软件,覆盖 Visium、MERFISH、Slide-seq、Stereo-seq 等多种平台。
综合推荐(尤其面向 Visium 用户)
| BASS | ||
| BayesSpace | ||
| SpaGCN | ||
| Seurat | ||
| STAGATE |
三个 Benchmark 共同揭示的规律
预处理影响巨大,后处理(如空间平滑)通常普遍提升聚类质量。 是否使用 H&E 并不决定成败:Seurat 等不用组织学图像的方法并不吃亏;更好的 H&E 不等于更好的聚类。 预设 cluster 数若与真实细胞类型数不符,会显著拉低 accuracy。 高度依赖数据集:同一软件在脑组织表现好、换组织可能变差;样本来源与测序平台都是关键因素。 算法类型没有绝对赢家:Bayesian(BASS/BayesSpace)、图方法(SpaGCN/Seurat)、深度学习(STAGATE)都能进第一梯队。 随机种子会影响部分方法的结果稳定性。
实操建议:Visium 项目若追求稳妥,可优先 Seurat或 SpaGCN;若算力充足、追求极致分群精度,再试 BASS / BayesSpace,并务必做 cluster 数敏感性分析。
第二步:空间可变基因(SVG)识别
做什么:找出表达随空间位置显著变化的基因,揭示组织学上看不出的「功能区域」。
Benchmark 来源:Li et al.(模拟数据 + auPRC)、Chen et al.(21 个真实数据集 + 软件间 SVG 列表相关性)。
综合推荐
| SpatialDE2 | |
| SPARK-X | |
| SOMDE | |
| Moran's I(Squidpy) |
关键发现
噪声越大,所有方法性能都下降。 不同软件返回的 SVG 列表重叠度很低——统计框架相似,但结果并不一致。 SVG 排名与基因表达量正相关,存在系统性偏差。 多数工具高灵敏度 OR 高特异度,很难两者兼得。 图方法与核方法整体表现相当。
实操建议:日常分析优先 SPARK-X;需要更保守、更精细的统计推断时再上 SpatialDE2;探索性分析可用 Moran's I作补充。
第三步:细胞-细胞通讯(Cell-Cell Communication)
做什么:基于配体-受体(L-R)数据库和空间邻近关系,推断哪些细胞群可能在「对话」。
Benchmark 来源:Liu et al.,16 款软件,用 距离富集分数(DES)衡量模拟 vs 真实数据中 L-R 空间距离模式的一致性。
综合推荐
| CellChat | |
| CellPhoneDB | |
| ICELLNET | |
| NicheNet | |
| SingleCellSignalR |
关键发现
准确性强依赖数据集。 各软件内置的 L-R 数据库不同,仅换数据库就会改变结果。 预测互作越多 → 召回率高;预测越少 → 精确率高。 目前无法用实验金标准直接验证L-R 表达是否等于真实通讯,这是领域共性局限。
实操建议:Visium + 聚类注释完成后,CellChat或 CellPhoneDB是较稳妥的起点;需要配体下游靶基因推断时可补充 NicheNet。
第四步:去卷积(Deconvolution)
做什么:对 Visium 等 spot 级数据,估计每个 spot 里各细胞类型的比例(通常需要配对 scRNA-seq 参考)。
Benchmark 来源:Li et al.、Yan & Sun、Li et al.(整合方法)等多项研究。
综合推荐
| Cell2location | 准确性最高 |
| Tangram | |
| RCTD | |
| CARD |
关键发现
强烈建议使用 scRNA-seq 参考;不依赖 scRNA 的 Berglund 等方法效果明显落后。 最优方法偏向 概率模型 + 深度学习(NMF、图方法、最优传输等相对弱势)。 标准化方式对结果影响大:多数 Benchmark 倾向 原始 count优于某些 lognorm / scTransform 方案(也因样本而异)。 spot 越小、数据越稀疏,整合类方法越吃力。 scRNA 与 ST 若细胞群组成假设不一致,会引入系统误差。 EnDecon等多方法集成只带来边际提升。
实操建议:常规 Visium 项目 → RCTD或 Tangram;有 GPU 集群、追求上限 → Cell2location。
一张「Visium 探索性分析」快速选型表
基于原文 Figure 2 决策树思路,整理为更易落地的版本:
你的 ST 数据(以 10x Visium 为例)│├─ 组织域识别 / 聚类│ ├─ 算力有限、要速度 → Seurat / SpaGCN│ └─ 算力充足、要精度 → BASS / BayesSpace│├─ 空间可变基因 SVG│ ├─ 常规首选 → SPARK-X│ └─ 精细统计 / 可接受慢 → SpatialDE2│├─ 细胞通讯 CCC│ ├─ 常规首选 → CellChat / CellPhoneDB│ └─ 需配体→靶基因网络 → NicheNet(补充)│└─ 细胞类型去卷积├─ 均衡实用 → RCTD / Tangram└─ 精度优先 + 大算力 → Cell2location
领域仍未解决的共性问题
原文 Conclusions 部分值得所有 ST 从业者记住:
「没有普适最优解」:性能高度依赖组织类型、平台、样本来源,可能存在算法对小样本 Benchmark 的过拟合。 参考数据不足:许多组织缺乏带细胞类型注释、与待分析样本匹配的 scRNA/ST 参考;Aquila、STOmics DB、SOAR 等库仍在完善中。 Pipeline 级验证缺失:单步 Benchmark 不等于整条流程最优——上游聚类参数会影响下游 SVG、通讯和去卷积。 领域迭代极快:新工具几乎每月都在出现,本文本质是时间点快照。 SVG 与 CCC 的结果列表在不同软件间一致性仍较差,需要生物学验证(ISH、蛋白、功能实验)支撑。
给不同用户的阅读建议
| 实验生物学家 | |
| 生信分析人员 | |
| 平台 / 方法开发者 | |
| 肿瘤 ST 项目 |
推荐 Pipeline 示例(Visium + 配对 scRNA)
Space Ranger 原始输出↓QC & 标准化(注意:去卷积步骤尽量保留 raw count 选项)↓组织域识别:Seurat(或 BASS / BayesSpace)↓SVG:SPARK-X↓去卷积:RCTD / Tangram(参考 scRNA-seq)↓细胞通讯:CellChat↓生物学验证 & 功能富集
总结
这篇 Meta-Review 的价值,不在于再发明一个新算法,而在于把分散在多篇 Benchmark 里的结论拉到一个页面上:
聚类:BASS / BayesSpace / SpaGCN / Seurat / STAGATE SVG:SPARK-X(首选)/ SpatialDE2(精细) 通讯:CellChat / CellPhoneDB / ICELLNET 去卷积:Cell2location / Tangram / RCTD
但作者反复强调:Benchmark 排名 ≠ 你的样本的最优解。真正决定结果质量的,往往是——
数据预处理是否得当、参考数据是否匹配、cluster 数是否合理、标准化方式是否与算法假设一致,以及有没有足够的生物学验证。
参考文献
Gillespie J, Pietrzak M, Song M-A, Chung D.A Meta-Review of Spatial Transcriptomics Analysis Software.Cells. 2025;14(14):1060.doi: 10.3390/cells14141060原文链接:https://doi.org/10.3390/cells14141060
解读基于原文及文中引用的 Benchmark 文献整理,仅供科研交流,分析流程请结合具体项目验证。

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