夜雨聆风
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临床常见标本的采集、转运及处理
（来源：WS/T 640—2026临床微生物学检验标本的采集和转运标准）
1.血培养标本
1.1 血培养适应证及采集套数
血培养采集指征、检验申请、采集方法、血培养瓶运送和接收按照WS/T 503的相关要求执行。血培养的适应证及采集套数见表4。
血培养标本尽量在抗微生物药物使用前采集；如果患者已使用抗微生物药物，宜在下次使用抗微生物药物前采集或使用含有或添加抗微生物药物吸附剂的血培养瓶。疑似菌血症时，血培养采集套数为至少2套血培养。
1.2 推荐的血液采集体积
1.2.1 普通细菌培养：成人患者采集至少 2 套血培养，每套血培养采集 20 mL 血液（或参考说明书体积）；婴幼儿和儿童患者推荐的采血量见表 5。
1.2.2 分枝杆菌培养：成人患者建议采集 3 次，每次 5 mL（或参考说明书体积）血液直接注入分枝
杆菌专用血培养瓶，室温下尽快送抵实验室。
1.2.3 真菌培养：成人患者采集 2 套～4 套血培养，每套血培养采集 20 mL 血液（或参考说明书体
积），宜接种 2 个需氧培养瓶或真菌培养瓶，室温下尽快送抵实验室。
2. 用于病毒学检验的血液标本
2.1 采集方法
采集方法参照静脉血液标本的采集方法，遵循 WS/T 661。
2.2 注意事项
用于病毒学检验的血液标本采集注意事项如下：
a）血浆核酸检验标本宜采用含有游离核酸保存剂的采血管；不可获取时宜选择 EDTA 抗凝的真空采血管；
b）血清核酸检验标本宜选择不含抗凝剂真空采血管；
c）病毒分离培养时，取 EDTA 抗凝血 5 mL～10 mL，室温下运送至实验室。 白细胞分离宜在 8 h内进行。
3.脑脊液标本
3.1 采集方法
脑脊液标本的采集方法如下：
a）患者去枕侧卧位，背部与检查台垂直，低头曲颈，使膝部尽量贴近腹部，脊柱前屈，使椎间隙张开便于进针；
b）确定穿刺点，一般选择腰 3～腰 4 椎间隙；
c）严格无菌操作，对腰椎穿刺点及其周围 15 cm 区域的皮肤充分消毒；d) 戴无菌手套，覆盖无菌孔巾，待消毒剂彻底挥发后，用 1％～2％利多卡因在穿刺点行皮内、皮下浸润麻醉，然后垂直缓慢进针，充分麻醉后拔针；
e）左手固定麻醉点，右手进针，对准脊椎间隙刺入皮下，穿刺至有落空感进入蛛网膜下腔，采集脑脊液分别放入 3 个无菌螺帽管中，做好标本标记、标清顺序；
f）标本量要求：细菌≥1 mL，真菌≥2 mL，分枝杆菌≥5 mL，病毒≥2 mL；
g）采集顺序要求：第一管用于生化学和免疫学检验，第二管用于微生物学检验，第三管可用于细胞学、分子核酸检验等。
3.2 注意事项
脑脊液标本的采集注意事项如下：
a）注明患者年龄，可为病原体诊断提供线索；
b）婴幼儿：可选择腰 4～腰 5 或腰 5～骶 1 椎间隙穿刺进针， 以免损伤脊髓。
4.腹腔标本
4.1采集方法
4.1.1腹水
腹水的采集方法如下：
a）依患者状况和腹水量，取平卧、侧卧、半卧位或坐位；
b）确定皮肤穿刺部位或切口的位置；
c）常规消毒穿刺点及其周围 15 cm 区域的皮肤，解开穿刺包，戴无菌手套，覆盖消毒孔巾；
d）行局部逐层麻醉后，在麻醉部位垂直刺入，放液或抽液后拔针并敷以无菌纱布；
e）采集 10 mL 或更多液体，置于无菌容器中，室温下立即送检。
4.1.2 腹膜透析液
腹膜透析液的采集方法：收集 50 mL 腹膜透析液置于无菌容器中；同时床旁接种 5 mL～10 mL 腹透液，分别注入需氧和厌氧血培养瓶，室温下立即送检。若不能立即送检，血培养瓶可置于 37 ℃条件下孵育。
4.2 注意事项
腹腔标本应室温下立即送检，标本量较少（＜1mL）时，宜在采集后30 min内送到实验室；用于厌氧菌培养的标本宜在采集后30 min内送到实验室，转运过程中标本尽可能与空气隔绝。
5.胸水
5.1采集方法
胸水的采集方法如下：
a）患者反向坐椅上，两臂置椅背，前额伏手臂上；不能起床者，可取半卧位，患侧前臂置于枕部；
b）用超声或叩诊方法定位穿刺点，常规消毒穿刺点及其周围 15 cm 区域的皮肤，解开穿刺包，戴无菌手套，覆盖消毒孔巾；
c）2％利多卡因麻醉穿刺部位；
d）沿肋骨上缘缓慢垂直刺入进针，当针刚进入皮肤，抽空穿刺针后乳胶管内空气，然后用止血钳夹闭；当针穿过壁层胸膜时，胸水即被吸入穿刺针后的乳胶管，连接 50 mL 注射器，放开止血钳即可抽液；
e）抽液完毕，拔除穿刺针并敷以无菌纱布；
f）采集 10 mL 或更多液体，置于无菌容器中，室温下立即送检。
5.2注意事项
胸水标本的采集注意事项同腹腔标本，见本标准第5.4.2条。
6.组织标本
6.1采集方法
6.1.1 外科手术采集的组织标本
外科手术组织标本的采集过程应严格无菌操作，采集方法如下：
a）外科手术组织标本难以获取，应谨慎处理；
b）采集足够量的组织标本，微生物学检验所需的标本量≥1 cm3 为宜；
c）选择合适的采样方法以区别污染和真正的感染，例如：骨科人工关节修复手术，在同一个手术部位不同的区域采集 5 块分开的组织，分别放置于 5 个容器并分别做 5 份培养；若来自同一个手术部位的 3 块或更多的组织生长相同的菌，那么该菌可能是关节的病原菌而非污染菌；
d）选择无菌保湿容器运输组织，小块组织宜用 2 mL 无菌水或无菌生理盐水保湿。
6.1.2经支气管镜肺活检的组织标本
经支气管镜肺活检的组织标本采集方法如下：
a）患者平卧位，局部麻醉；
b）经鼻导入支气管镜到达病变所在的肺段或亚段后，将活检钳插入所选择的亚段支气管内，穿过支气管壁至病变区；
c）打开活检钳推进少许，在患者呼气末关闭活检钳获得标本，缓缓退出；
d）将取出的组织放入含 2 mL 无菌生理盐水的无菌容器中，立即送到实验室。
6.1.3 CT 引导下经皮穿刺肺活检组织标本
CT引导下经皮穿刺肺活检组织标本的采集方法如下：
a）根据 CT 显示病变的部位选择相对舒适的体位；
b）穿刺点常规消毒，待消毒剂彻底挥发后，行局部麻醉至胸膜，保留针头再次局部扫描确认进针深度和角度；
c）在患者屏气时快速进针至病灶后再次对病灶扫描，当穿刺针尖达到预定位置后切割取材；
d）切割获得的（1.0～2.0）cm×0.1 cm 大小的组织标本，放入含 2 mL 无菌生理盐水的无菌容器内送微生物实验室。
6.1.4心律植入装置感染标本（囊袋组织、赘生物、起搏器等）
心律植入装置感染标本的采集方法如下：
a）采集标本过程中严格无菌操作，标本应放入无菌容器后送检；
b）行起搏器拔除术，切开囊袋部位取样；取样前不应使用抗微生物药物对囊袋内进行清创消毒；
c）囊袋组织：打开囊袋后，用新更换的无菌工具取囊袋内组织块约 2 cm2 ，加入适量无菌生理盐水，浸没囊袋组织，立即送检；
d）心律植入装置：起搏器、导线等心律植入装置也可作为标本送检培养；将术中拔除的起搏器和导线立即放入无菌容器中，立即送检；
e）赘生物：对于导线上附着的赘生物宜将其连带导线一起剪下，加入可浸没标本的无菌生理盐水，立即送检；
f）对于导线这类细长标本，从患者体内拔出后立即送检。
6.2注意事项
组织标本应浸泡于无菌生理盐水中尽快送检，甲醛处理后的标本不能进行微生物学培养。若组织标本采集量较少（＜1 cm3）时，或用于厌氧菌培养的标本宜在采集后30 min内送到实验室。组织厌氧菌培养，宜采用厌氧转运容器运送；大块组织标本可直接用于厌氧培养。
7.关节假体周围感染标本（关节液、假体及假体周围组织）
7.1采集方法
7.1.1关节液
关节液的采集方法如下：
a）术前穿刺：患者仰卧于手术台上，下肢半屈曲位；穿刺部位按常规进行皮肤消毒，待消毒剂彻底挥发后，用局部麻醉药作局部麻醉；用注射器，一般于髌骨外上方， 由股四头肌腱外侧向内下刺入关节囊；或于髌骨下方， 由髌韧带旁向后穿刺达关节囊；术后用消毒纱布覆盖穿刺部位，再用胶布固定；
b）术中穿刺： 同翻修手术同时进行，患者全麻后，消毒铺巾，切开皮肤、皮下脂肪组织达关节囊，用注射器穿刺抽取关节液。
7.1.2假体
假体的采集方法：术中穿刺抽取关节液后，取出假体，放置于塑料无菌容器中。
7.1.3假体周围组织
假体周围组织的采集方法：术中取假体后，更换手术刀采集4 块～5 块组织，分别置于不同的无菌小瓶中，并标明每块组织的部位或编号。
7.2注意事项
关节假体周围感染标本的采集注意事项如下：
a）引起关节假体周围感染的病原菌可形成生物膜，建议临床在翻修术中同时送检关节液、假体和假体周围组织；
b）术前普通关节液穿刺培养宜在停用抗微生物药物 2 周后采集，以提高培养阳性率。
8.尿液标本
8.1 采集方法
遵循 WS/T 348 和 WS/T 489。
8.1.1导尿管尿液标本
8.1.1.1 直接导尿管尿液
直接导尿管尿液的采集方法如下：
a）用肥皂水或清水清洗尿道口；
b）无菌操作将导管通过尿道插入膀胱；
c）弃去先流出的 15 mL 尿液之后，采集尿液到无菌螺帽容器或硼酸转运管。
8.1.1.2留置导尿管尿液
留置导尿管尿液的采集方法如下：
a）夹住导尿管 10 min～20 min 后，用 75％酒精消毒导管采集部位；
b）用注射器无菌采集 5 mL～10 mL 尿液；
c）将尿液转入带螺帽无菌容器或硼酸转运管。
8.1.2中段尿液
中段尿液的采集方法如下：
a）用肥皂水或清水清洗外阴后，分开阴唇（女性），缩回包皮（男性），开始排尿；
b）排出几毫升后，不停止尿流，采集中段尿液。
8.1.3 用于分子诊断的清晨首次尿液
用于分子诊断的清晨首次尿液的采集方法如下：
a）留取少于 30 mL 的清晨首次尿液；
b）尿液采集到无菌容器或核酸扩增试验厂商提供的专用转运培养基内送检。
8.1.4 耻骨上膀胱穿刺尿液
耻骨上膀胱穿刺尿液的采集方法如下：
a）使用皮肤消毒剂消毒脐部至耻骨区域；
b）待消毒剂彻底挥发后，麻醉穿刺部位（耻骨上 2 cm 或 2 横指）；
c）从膀胱吸取约 20 mL 尿液；
d）无菌操作将尿液转入无菌容器内送检。
8.1.5 婴幼儿尿液
婴幼儿尿液的采集方法如下：
a）采样人员用肥皂水或清水洗手；
b）分开婴幼儿双腿；
c）用肥皂和水清洗耻骨和会阴区，使之干燥，无粉末、油和护肤品等污染物；
d）采用儿科尿液收集袋，移去胶条表面的隔离纸；
e）对于女性婴幼儿，拉紧会阴部皮肤，将胶条紧压于外生殖器四周的皮肤上，固定收集袋于直肠与阴道之间的位置，避免来自肛门区域的污染；对于男性婴幼儿，将收集袋套于阴茎上，将胶条压紧于会阴部皮肤上；
f）确保胶条牢固地粘于皮肤，胶条的粘贴无皱折；
g）定时察看收集袋中的尿液（如每隔 15 min）；
h）将收集袋中的尿液倒入无菌容器，室温下立即送检。
8.2注意事项
申请单上注明标本采集自留置导尿管、直接导尿管、穿刺尿液等。若为穿刺尿液需注明是否进行厌氧培养； 申请单上标明患者临床症状及抗微生物药物使用情况。尿液标本的采集注意事项如下：
a）通常情况下，带有留置导尿管的患者48 h～72 h 就会有定植菌，且常为多种细菌，应拒收长期留置导尿管的导尿管尿液；
b）中段尿液标本不能进行厌氧菌培养；
c）仅在临床申请时进行厌氧培养；
d）耻骨上膀胱穿刺尿液可避免尿液标本被尿道或会阴部细菌污染。
9.支气管镜标本（支气管镜保护性毛刷、BALF）
9.1采集方法
支气管镜标本的采集方法如下：
a）用 2％利多卡因进行局部麻醉；
b）患者去枕仰卧位，操作者站于患者头侧；
c）用局部麻醉药润滑患者两个鼻孔及支气管镜，经鼻或经口（气管插管或切开患者经人工气道）导入支气管镜，根据影像学或支气管镜下表现，选取病变段严重区域进行灌洗或采样；
d）BALF：将支气管镜顶端紧密嵌顿在目标支气管段或亚段开口，末端连接无菌标本采集杯和负压吸引器，经操作孔道分 5 次快速注入总量为 60 mL～100 mL 的 37 ℃或室温灭菌生理盐水，每次灌入 20 mL～50 mL 生理盐水后， 以合适的负压（推荐小于-100 mmHg 的负压）吸引回收灌洗液，可直接使用标本采集器送检，也可在无菌操作下吸取 10 mL～20 mL BALF （≥5 mL）到带螺帽无菌容器中，立即送检；
注：每次回吸收量不低于灌入量的5％（总回收率以≥30％为宜）；若每次的回收率均＜5％ ，则要及时停止灌洗，以免液体大量潴留于肺内；儿科患者只能灌入（1 mL～2 mL）/kg，通常儿童的回收量不超过10 mL，大于10 mL的标本可离心以提高阳性率。
e）支气管镜保护性毛刷：将检查用毛刷插入支气管镜，推进毛刷直至推出护套，刷取标本后将刷子抽回护套，取出整个毛刷，用无菌剪刀将刷子头剪下，放入含 1 mL 无菌生理盐水或乳酸钠林格溶液的无菌容器中，立即送至实验室；
f）支气管吸引物：通过支气管镜直接抽吸呼吸道较大管道内的分泌物；
g）操作结束后，迅速将支气管镜从气道内收回。
9.2注意事项
支气管镜标本的采集注意事项如下：
a）支气管镜取材的标本会受到上呼吸道菌群的污染，宜进行质量评估；
b）支气管镜保护性毛刷标本大概含有 0.001 mL～0.01 mL 的分泌物，为避免分泌物干燥引起细菌死亡，毛刷迅速置于含 1 mL 无菌生理盐水的无菌容器中；
c）BALF 标本宜定量培养，定量结果与临床的相关性优于痰标本；
d）麻醉剂可抑制细菌生长，也会影响标本的质量。
10.痰
10.1采集方法
遵循 WS/T 499。
10.1.1咳痰
咳痰标本的采集方法如下：
a）向患者说明痰和唾液的区别；
b）嘱带假牙的患者摘掉假牙；
c）咳痰前患者需用清水漱口；
d）指导患者用力咳出深部痰，勿将唾液和鼻后分泌物当作痰送检；
e）立即盖好盖子并拧紧，立即送检；
f）最好选择晨起漱口后，咳出的深部痰送检。
10.1.2诱导痰
诱导痰的采集方法如下：
a）当咳嗽无痰或少痰时，可采集诱导痰；
b）患者先刷牙（口腔黏膜、舌头和牙龈），勿用牙膏；
c）再用无菌水或无菌生理盐水漱口；
d）用超声雾化器，患者吸入 3％ NaCl 约 3 mL～5 mL；
注：有气道高反应者慎用高渗NaCl诱导。
e）用无菌螺帽宽口容器收集诱导痰标本。
10.1.3气管吸引物
气管吸引物的采集方法是通过气管内导管收集标本。
10.2注意事项
痰标本的采集注意事项如下：
a）真菌和分枝杆菌诊断宜连续采集多份痰标本；
b）痰标本不能进行厌氧培养；
c）痰涂片革兰染色镜检对痰培养结果具有参考价值。
11.鼻咽拭子
11.1采集方法
鼻咽拭子的采集方法如下：
a）嘱患者头部保持不动，去除鼻前孔中表面的分泌物；
b）通过鼻腔轻轻、缓缓插入拭子至鼻咽部；
c）当遇到阻力后即到达后鼻咽，停留数秒吸取分泌物；
d）轻轻旋转取出拭子，置于转运培养基中；
e）用于病毒学检验的拭子，将拭子头浸入病毒运送液，尾部弃去，旋紧管盖；
f）用于细菌学检验的拭子，插回采样装置或适宜的转运装置中。
11.2注意事项
鼻咽拭子的采集注意事项如下：
a）不推荐鼻咽拭子做普通细菌培养，特殊细菌除外，如百日咳鲍特菌、脑膜炎奈瑟菌；
b）若怀疑百日咳鲍特菌感染，需提前通知实验室，准备特殊的转运培养基（Regan-Lowe） ；条件许可时可提供接种培养基，直接床旁接种后转运至实验室；
c）鼻咽拭子不能用于检验鼻窦炎的病原菌。
12.口咽拭子
12.1采集方法
口咽拭子的采集方法如下：
a）嘱患者坐下，头后倾，张大嘴，去除鼻前孔中表面的分泌物；
b）采样者用压舌板固定舌头，用涤纶或藻酸钙拭子越过舌根到咽后壁及扁桃体隐窝、侧壁等处；
c）反复擦拭 3 次～5 次，收集黏膜细胞；
d）轻轻取出拭子，避免触及舌、悬垂体、 口腔黏膜和唾液；
e）拭子插回采样装置中或适宜的转运装置中。
12.2注意事项
口咽拭子的采集注意事项如下：
a）对化脓性咽炎， 口咽拭子细菌培养主要用于筛查 A 群β-溶血链球菌和溶血隐秘杆菌；
b）当口咽拭子检验淋病奈瑟菌时，临床需提前告知实验室；
c）对于儿科患者，宜常规报告流感嗜血杆菌；
d）呼吸道感染病原检测鼻咽拭子或鼻咽抽吸物优于咽拭子。
13.粪便标本
13.1采集方法
应在感染急性期采集腹泻粪便标本；排除一些病原体的携带状态，需要连续3份标本阴性；若需要连续采集3份标本，则两次采集标本间隔48h。申请单上建议标注特殊病史。粪便标本的采集方法如下：
a）将粪便排入干燥清洁的便盆，避免使用坐式马桶或蹲式便盆；粪便标本中不宜混入尿液及其他异物，采集过程尽量无菌操作；
b）用无菌竹签挑取标本中异常部分（有黏液、脓液和血液的部分）2 mL～5 mL 粪便悬液或 2 g~5 g 粪便标本置于无菌螺帽容器中，立即送检。
粪便标本的拒收原则如下：
a）干燥的拭子、含钡粪便、黄软成形便、干便或明显污染的粪便；
b）一天内重复送检的标本；
c）未使用转运培养基，采集后室温条件下超过 2 h 未送检的粪便；
d）使用转运培养基，4 ℃条件下保存超过 48 h 或 35 ℃条件下保存超过 24 h 未送检标本。
13.2注意事项
粪便标本的采集注意事项如下：
a）粪便标本常规不进行厌氧培养（艰难拟梭菌除外）；
b）结肠造口术和回肠造口术标本的运输方式与粪便标本相同；
c）肠炎和发热病人宜同时送检血培养；
d）下列腹泻患者宜连续 3 d 送检标本：社区获得性腹泻（入院前或 72 h 内出现症状）；医院获得性腹泻（入院 72 h 后出现症状），且至少有下列情况之一，如大于65 岁并伴有基础疾病、 HIV 感染、粒细胞缺乏症（中性粒细胞＜0.5×109/L）及疑似院内暴发感染时。
14.直肠拭子和肛拭子
14.1采集方法
婴儿或重症患者腹泻时且暂时没有粪便，宜采集直肠拭子标本检验腹泻病原菌。肛拭子不宜用于腹泻病原菌培养，但可用于多重耐药菌筛查。直肠拭子和肛拭子的采集方法如下：
a）无菌棉拭子用无菌生理盐水湿润，轻轻地插入肛门括约肌上方（成人约 6 cm～7 cm，儿童约2 cm～3 cm），旋转，取出，置于转运培养基中，拭子上可见粪便；
b）对于淋病奈瑟菌培养，采集肛环内的肛窦部位，尽量避免粪便污染；
c）立即将淋病奈瑟菌培养拭子置于转运培养基中，或在患者床旁接种。
14.2 注意事项
直肠拭子和肛拭子的采集注意事项如下：
a）常规培养通常针对沙门菌属和志贺菌属；如果怀疑其他细菌感染，宜先咨询实验室；
b）如果怀疑患者感染大肠埃希菌O157:H7、耶尔森菌属、弧菌属、气单胞菌属或邻单胞菌属，宜通知实验室；
c）在申请单上标注检测的病原菌，尤其是怀疑淋病奈瑟菌感染时；
d）不宜使用拭子标本检验艰难拟梭菌毒素。
15.子宫颈内或宫颈标本
15.1采集方法
子宫颈内或宫颈标本的采集方法如下：
a）用温盐水湿润阴道窥器；
b）使用阴道窥器轻轻按压子宫，打开窥器，使用藻酸钙、涤纶或没有毒性的棉拭子采集分泌物或者打开窥器，将拭子插入宫颈管 1 cm～2 cm，转 2 圈～3 圈采集分泌物，必要时停留 20 s~30 s 并转动取样。
15.2注意事项
怀疑淋病奈瑟菌时，可同时采集直肠拭子与子宫颈标本。
16.男性泌尿生殖道标本
16.1采集方法
男性泌尿生殖道标本的采集方法如下：
a）从尿道挤压分泌物，一根拭子采集分泌物用于培养，保存于转运培养基中送检；另一根拭子采集分泌物用于涂片，将拭子在玻片表面滚动 2 cm～3 cm；
b）若无分泌物，可将泌尿生殖道拭子插入尿道约 2 cm，轻轻旋转取出，将标本尽快接种于特殊培养基，并置于 35 ℃的 CO2 环境中培养，接种后的拭子制备涂片用于染色镜检，最好采集两个拭子分别用于涂片和培养。
16.2 注意事项
尿道分泌物革兰染色查到白细胞内革兰阴性双球菌可作为男性淋病患者的诊断依据。
17.眼部标本
17.1采集方法
使用具体的解剖部位及类型描述来自眼部的标本，如左眼、右眼、角膜/结膜分泌物、角膜/结膜刮取物、结石、前房液、玻璃体液等。眼部标本的采集方法如下：
a）结膜囊分泌物：将植绒拭子用病原体保存液或无菌生理盐水预湿， 由内眦部开始从内到外旋转轻拭下方结膜囊和下睑结膜表面（注意内眦部） ，采集后立即接种培养基或立即转运；接种后制备涂片，将拭子在载玻片上自内而外滚动涂成直径 1.0 cm～1.5 cm 的近圆形；
b）角膜及结膜刮片： 由眼科专业人员采集，角膜刮片推荐用 15 号手术刀片刮取溃疡基底部、溃疡进行缘或损伤部位，将刮取物直接接种于培养基；睑结膜刮片宜翻转上睑暴露睑结膜，固定后，垂直刮擦组织；将刮取物直接涂抹于载玻片上，尽量均匀涂开；
c）房水及玻璃体液： 由眼科专业人员采集，将无菌注射器中的标本直接接种于培养基或液体增菌培养基，常规进行苛养菌、真菌及厌氧菌培养，同时直接制片或甩片制片。
17.2注意事项
眼部标本的采集注意事项如下：
a）所有标本均应迅速送至实验室；
b）角/结膜刮取物、前房及玻璃体液量很少，宜在诊室或患者床旁采集标本后直接接种培养基和制备涂片；
c）结膜感染时，即使只有一只眼睛感染，也宜对两眼的结膜取样，有助于正常定植菌与致病菌的判断；
d）结膜刮片采样可在使用不含防腐剂的表面麻醉剂后进行，用于细菌、真菌、沙眼衣原体、病毒和阿米巴等培养；分泌物采集不建议使用麻醉药。
18.耳标本
18.1采集方法
耳标本的采集方法如下：
a）取中耳标本时，若鼓膜完整，先用肥皂水清洁耳道，再行鼓膜穿刺术用注射器抽出中耳内液体；
b）取中耳标本时，若鼓膜穿孔，通过耳镜用软杆的采样拭子收集液体（仅限于需氧培养）；
c）外耳道：用湿拭子将耳道的碎屑或硬皮除去，用一新拭子在外耳道用力旋转拭子取样。
18.2注意事项
耳标本采集的注意事项如下：
a）对复杂的、反复的或慢性顽固性中耳炎宜做鼓膜穿刺术；
b）中耳渗出液直接涂片革兰染色镜检对临床很有帮助。
19.皮肤、结缔组织及伤口标本
19.1采集方法
皮肤、结缔组织及伤口标本的采集方法如下：
a）闭合性脓肿：消毒皮肤后，用注射器抽取脓肿物，无菌转移所有抽吸物至厌氧和需氧转运容器中；
b）开放性脓肿：用无菌生理盐水擦拭去除表面分泌物，尽可能采集抽吸物，或将采样拭子插入至病灶的底部或脓肿壁取其新鲜边缘部分；
c）脓疱或水疱：酒精消毒挥发后，挑破脓疱，用拭子收集脓液；较大的脓疱消毒后，宜直接用注射器抽取；陈旧的脓疱，去除损伤表面，用拭子擦拭损伤基底；
d）蜂窝织炎液化后宜先注射无菌生理盐水，随后抽吸，可获得足量的标本进行培养；若患者病情迅速进展，或蜂窝织炎没有液化则需要采集组织活检标本；
e）伤口标本：区分浅表伤口标本、深部伤口标本及外科手术伤口标本；宜从感染进展的前缘采集活检标本；活检标本和抽吸物（脓液、渗出液）优于拭子标本；浅表伤口标本不能进行厌氧培养；
f）烧伤伤口：清洁并清除烧伤创面，有液体渗出时，用拭子擦拭取样；烧伤的组织宜做定量培养，定量检验结果≥105 CFU/g 则可预示有可能进展为创伤相关脓毒症；
g）溃疡或褥疮：用无菌生理盐水擦拭去除表面分泌物，尽可能采集抽吸物。
19.2注意事项
组织标本应浸泡于无菌生理盐水中尽快送检，甲醛处理后的标本不能进行微生物学培养。若组织标本采集量较少（＜1 cm3）时，或用于厌氧菌培养的标本宜在采集后30 min内送到实验室。组织厌氧菌培养，宜采用厌氧转运容器运送；大块组织标本可直接用于厌氧培养。
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